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  新医学  2017, Vol. 48 Issue (7): 438-442  DOI: 10.3969/j.issn.0253-9802.2017.07.002
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王月秋, 王丽宏, 车慧, 梁梅花, 傅雪莲. 微小RNA与胰岛素PI3K/AKT信号转导通路[J]. 新医学, 2017, 48(7): 438-442.
Liu Juan, Huang Huarong, Wang Yueqiu, Wang Lihong, Che Hui. Correlation between microRNAs and insulin phosphatidylinositol 3-kinase/protein kinase B signal transduction pathway[J]. Journal of New Medicine, 2017, 48(7): 438-442.

基金项目

黑龙江省应用技术研究与开发计划项目(GA14C101-02)

通讯作者

王丽宏, E-mail: nd6688@163.com

文章历史

收稿日期:2017-01-15
微小RNA与胰岛素PI3K/AKT信号转导通路
王月秋, 王丽宏, 车慧, 梁梅花, 傅雪莲     
150081 哈尔滨,哈尔滨医科大学附属第二医院内分泌代谢病科二病房(王月秋, 王丽宏, 车慧, 梁梅花, 傅雪莲),在读硕士研究生(王月秋)
摘要: 胰岛素信号转导是指胰岛素与靶器官细胞膜上特异性受体结合,从而激活受体、受体底物及下游信号分子,完成葡萄糖及其他营养物质合成代谢的过程。研究表明,胰岛素磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)/蛋白激酶B(AKT)信号转导通路参与了胰岛素抵抗的发生。微小RNA(miR)是基因表达的关键,能参与胰岛素信号转导的调控,已成为胰岛素抵抗的研究热点,其异常表达可以引起胰岛素信号转导通路中胰岛素受体、胰岛素受体底物、PI3K、AKT及葡萄糖转运蛋白4等相关级联蛋白功能损伤,从而导致胰岛素抵抗和引发2型糖尿病。因此明确miR与胰岛素PI3K/AKT信号转导通路的相关性对胰岛素抵抗和2型糖尿病的发生、发展及治疗具有重要意义。该文对参与调控胰岛素PI3K/AKT信号转导通路中相关蛋白表达的miR做一综述。
关键词: 微小RNA    胰岛素磷脂酰肌醇3-激酶/蛋白激酶B信号转导通路    胰岛素抵抗    
Correlation between microRNAs and insulin phosphatidylinositol 3-kinase/protein kinase B signal transduction pathway
Liu Juan, Huang Huarong, Wang Yueqiu, Wang Lihong, Che Hui     
Section 2 of Department of Endocrine and Metabolic Disease, the Second Affiliated Hospital of Harbin Medical University, Harbin 150081, China
Corresponding author: Wang Lihong, E-mail: nd6688@163.com
Abstract: Insulin signal transduction is the bind between insulin and specific receptors on the cell membrane of target organs, thereby activating the insulin receptor, insulin receptor substrate and downstream signaling molecules to complete the metabolism process of glucose and other nutrients. Previous studies have demonstrated that the insulin phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) /protein kinase B (AKT) signal transduction pathway is involved in the occurrence of insulin resistance. MicroRNA (miR) is a vital factor of gene expression and participates in the regulation of insulin signal transduction. It has become a hot topic of insulin resistance-related studies. The abnormal expression of miR can damage the function of a cascade of proteins in the insulin signal transduction pathway including insulin receptor, insulin receptor substrate, PI3K, AKT and glucose transporter 4, thereby leading to insulin resistance and type 2 diabetes mellitus. Consequently, elucidating the correlation between miR and insulin PI3K/AKT signal transduction pathway plays a pivotal role in the incidence, development and treatment of insulin resistance and type 2 diabetes mellitus. This paper reviews the miRs which are involved in the regulation of the expression of related proteins in the PI3K/AKT signal transduction pathway.
Key words: MicroRNA    Insulin phosphatidylinositol 3-kinase/protein kinase B signal transduction pathway    Insulin resistance    

微小RNA(miR)是一类非编码单链小分子RNA,长约22 nt,广泛存在于各种生物中。miR可以与靶基因RNA的3'端非编码区域(3'UTR)碱基互补配对,在转录后调控靶蛋白的表达,参与细胞的增殖、分化和凋亡等过程[1]。胰岛素磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)/蛋白激酶B(AKT)信号通路在胰岛素介导的能量代谢过程中发挥主要作用,通路中受体前、受体和受体后任一环节受损均会导致胰岛素抵抗,其中以胰岛素与受体结合及受体激活后的胞内信号转导尤为重要[2]。胰岛素信号的转导也可以受脂肪、炎症因子等多种因素影响,随着研究的深入,人们发现miR可以通过调控胰岛素信号通路中级联蛋白的表达参与胰岛素抵抗的发生与发展[3]。此过程涉及的主要蛋白包括胰岛素受体(InsR)、胰岛素受体底物蛋白1/2(IRS1/2)、PI3K、AKT和葡萄糖转运蛋白4(GLUT4)。本文就参与调控PI3K/AKT通路的miR作一综述。

一、miR与InsR

InsR是胰岛素信号转导通路的第一个环节,其数量与活性直接影响组织细胞对胰岛素的敏感性,是引起胰岛素抵抗的重要靶点之一。Let-7是早期发现的miR家族成员之一,最初被证实为抑癌基因,Lin28蛋白是Let-7的抑制物, 能抑制Let-7的生物合成[5]。有研究者报道Lin28/Let-7也参与葡萄糖代谢的调节过程[4-5]。研究者应用荧光素酶基因技术对人表达研究外源基因的细胞株HEK293T进行研究,发现InsR和IRS2的3'UTR是Let-7的作用靶点,而过表达Let-7或抑制Lin28均能抑制PI3K通路转导[5]。在C2C12成肌细胞中Lin28表达上调和Let-7表达下降均能促进PI3K/AKT通路的激活。小窝蛋白-1由蛋白质和脂类组成,参与物质跨膜转运,是细胞信号分子富集和转导的枢纽。目前已有研究证实在脂肪组织中miR-103/107失活可以上调小窝蛋白-1,进而增加InsR的稳定性,增强胰岛素信号传导,促进胰岛素刺激的葡萄糖吸收[6-7]。蛋白酪氨酸磷酸酶1B(PTP1B)是一种非跨膜蛋白酪氨酸磷酸水解酶,位于胞浆内质网,能维持酪氨酸蛋白磷酸化的平衡,通过促进InsR去磷酸化参与细胞信号转导。Yang等[8]对胰岛素抵抗的肝细胞进行研究发现,该类细胞中miR-122的表达明显下降,miR-122的下调可减轻对其靶基因PTP1BmRNA的抑制,进而增加InsR去磷酸化,引起胰岛素抵抗。Motohashi等[9]用荧光素酶标记miR-128a靶基因的3'UTR,发现InsR、IRS-1和PI3K的3'UTR均可与miR-128a靶向结合,而且miR-128a的过度表达能抑制以上3种蛋白的活性。也有Karolina等[10]提出蛋白酪氨酸磷酸酶非受体型1(PTPN1) 可以抑制胰岛素与InsR结合,而PTPN1的表达又受miR-146a调控,miR-146a可以通过抑制PTPN1表达来促进胰岛素信号转导。在糖尿病和处于糖尿病前期的患者中Karolina等[10]也发现miR-192的表达水平明显增高,miR-192可作用于InsR来参与葡萄糖的代谢。以上研究表明miRs可通过影响InsR参与胰岛素抵抗。

二、miR与IRS

IRS实际上是一种存在于胞质中的由6个蛋白质组成的蛋白激酶,在胰岛素抵抗中发挥着一定的作用。其中IRS1/2在人体中广泛表达并具有重要的生物学意义。IRS级联反应是胰岛素信号转导通路下游信号转导过程中最为重要的蛋白级联反应[11-12]。Jeong等[13]证实miR-96的异常表达可明显降低IRS1的表达,损伤胰岛素信号转导通路。据Ryu等[14]报道,线粒体功能障碍引起胰岛素抵抗的最主要原因是miR-126抑制了IRS1的表达。除miR-126外,Karolina等[10]在2型糖尿病模型大鼠胰腺、肝脏、脂肪、骨骼肌和外周血以及2型糖尿病患者外周血中发现miR-144表达水平增高,可通过抑制IRS1的活性影响胰岛素信号转导。此外,Li等[15]在经棕榈酸、油酸处理的C2C12成肌细胞中发现miR-7也能通过抑制IRS1的表达来抑制胰岛素信号转导。在IRS中,IRS2也是miR作用的靶点之一。Agarwal等[16]提出,miR-135a可以很大程度降低IRS2水平,抑制miR-135a后IRS2的表达水平明显增高。Frost等[5]也证实了Let-7可以靶作用于InsR和IRS2的3'UTR。Dávalos等[17]报道miR-33a/b能够靶向作用于IRS2的mRNA 3'UTR,过表达miR-33a/b可抑制IRS2 mRNA,影响胰岛素信号转导。

三、miR与PI3K

PI3K作为胰岛素受体下游的关键信号分子,能直接激活AKT,进而促进下游GLUT4分子的活化,增加葡萄糖摄取。目前已有多个研究显示,胰岛素刺激的PI3K在胰岛素介导的葡萄糖摄取中起着至关重要的作用[18-19]。从结构角度看,PI3K异二聚体包括调节亚基和催化亚基,调节亚基包括p85α、p85β、p55α、p50α和p55γ,而催化亚基包括p110α、β和δ[20]。Zampetaki等[21]指出miR-126表达下调也可促进胰岛素信号转导,这主要通过作用于其靶目标p85β来实现的,p85β主要起稳定和传导PI3K信号的作用,因此,miR-126能通过作用于PI3K参与调节胰岛素信号的转导。Liu等[22]发现在脂肪组织和骨骼肌中,miR-29也能抑制PI3K调节亚基p85α的表达。Ling等[23]对胰岛素抵抗脂肪细胞和正常脂肪细胞进行miR微阵列分析,发现与正常细胞组相比胰岛素抵抗组脂肪细胞中的miR-320表达水平增高了50倍,随后应用生物信息学作进一步研究发现,PI3K的p85亚基是miR-320的作用靶点,抑制miR-320可以使PI3K的p85亚基恢复到正常水平,而且PI3K下游的AKT磷酸化和GLUT4的表达水平也得以恢复,此外胰岛素刺激下的葡萄糖摄取能力也恢复了41%。Zhou等[24]发现在大鼠成肌细胞L6细胞中过表达miR-30d可显著降低PI3Kβ调节亚基的水平,同时减少葡萄糖的消耗和吸收;相反,基因敲除miR-30d后,该亚基水平明显升高,葡萄糖的利用也相应增加。

四、miR与AKT

AKT为胰岛素信号转导通路中将活化的PI3K连接到激活的GLUT4上的关键蛋白[24]。氧化固醇结合蛋白8(ORP8) 是一类具有共同的氧化固醇结合域的蛋白质,在巨噬细胞、干细胞、脾脏、肝脏、脑组织中高度表达,在调节脂质代谢以及信号级联反应中具有重要作用。在胰岛素作用下,ORP8作为上游信号分子可直接控制AKT磷酸化,而miR-143过表达则会降低ORP8的活性,影响AKT活化,进而降低胰岛素的敏感性[25-26]。Jordan等[27]的研究显示在遗传或饮食导致肥胖的老鼠模型的肝脏中miR-143的表达水平上升,miR-143可下调ORP8的表达水平,进而降低AKT活性,从而影响胰岛素信号转导。He等[28]报道,在脂肪细胞3T3-L1细胞中,miR-29的过表达可抑制胰岛素刺激的AKT磷酸化和最终的葡萄糖摄取。研究者对肝脏Huh7细胞进行研究表明,miR-33b能通过减少AKT的磷酸化来减弱胰岛素的信号转导[17]。人第10号染色体缺失的磷酸酶基因(PTEN)是一种新发现的抑癌基因,在细胞生长、凋亡等方面具有重要作用,PTEN能影响AKT的磷酸化,阻碍胰岛素信号转导。Ling等[29]指出miR-21在胰岛素抵抗的脂肪细胞3T3-L1中的表达水平明显下降,上调miR-2的表达水平可降低PTEN表达水平,同时增强AKT磷酸化,改善胰岛素抵抗。Sayed等[30]提出在转基因小鼠的心脏组织中,miR-21过表达可以增加AKT的磷酸化,减少心肌梗死面积并改善心力衰竭症状。He等[31]发现下调miR-383的表达水平可以促进AKT信号通路的转导。Li等[15]提出,在肌细胞中过表达miR-7可以抑制胰岛素刺激的AKT磷酸化进而影响葡萄糖的摄取。

五、miR与GLUT

GLUT家族是一类镶嵌在细胞膜上转运葡萄糖的载体蛋白,细胞对葡萄糖的摄取需要借助GLUT家族的转运以易化扩散的方式顺浓度梯度进行。目前已发现的GLUT有十余种,其中GLUT4在肌肉和脂肪细胞中高度表达[2, 18],因此GLUT4的表达和功能的改变与肌肉和脂肪细胞胰岛素抵抗的产生密切相关。Kruppel样转录因子15(KLF15) 由KLF15基因表达,具有3个高度保守的锌指结构,广泛存在于组织器官中,尤以心脏、肾、肝、脂肪细胞、骨骼平滑肌为甚,在糖代谢、能量利用等方面发挥重要作用。目前KLF15被证实为GLUT4的调节因子,在骨骼肌和脂肪组织中miR-133可以作用于KLF15来降低GLUT4的表达水平,从而影响胰岛素刺激的葡萄糖吸收[32]。有研究显示,GLUT4的表达也受miR-21a-5p、miR-29a-3p、miR-29c-3p、miR-93-5p、miR-106b-5p、miR-133a-3p、miR-133b-3p、miR-222-3p及miR-223-3p控制,它们可直接或间接调节GLUT4的表达从而参与糖尿病的发生与发展[33]。有研究证实miR-143参与了脂肪细胞的分化和GLUT4的表达[26]。此外,Karolina等[10]提出,GLUT4可能是miR-150的作用靶点。Zhou等[24]发现在大鼠成肌细胞L6中,过表达miR-106能显著降低GLUT4水平,从而抑制葡萄糖的摄取和利用。相反,在胰岛素抵抗的细胞中抑制miR-106b的表达则可增高GLUT4水平,提高葡萄糖的摄取和利用。He等[28]指出突触融合蛋白-1是miR-29的靶目标,其可与神经突触前膜胞内蛋白18相互作用,参与GLUT4囊泡融合到质膜的过程,从而调节葡萄糖的摄取。

六、总结与展望

miR在胰岛素抵抗中发挥着重要作用, 其主要通过调节胰岛素信号通路中关键蛋白的表达及活性来影响胰岛素的外周作用。随着有关胰岛素信号转导通路及miR研究的不断深入,已有许多miR被证实与胰岛素抵抗的发生密切相关(表 1),提示miR可作为治疗胰岛素抵抗的潜在靶点[34]。1个miR可能靶向作用于多种mRNA,同时各miR之间也可能相互合作共同调节同一转录因子的表达,但相关的机制十分复杂,目前尚未清楚。此外,以上介绍的多项研究均采用动物模型,存在一定的局限性,在今后仍需更进一步行临床应用的探索。相信随着医学技术的不断革新,相关的研究终会取得突破性进展,为今后的基因诊断、治疗和早期干预2型糖尿病开辟更多的途径。

表 1 与胰岛素PI3K/AKT信号转导通路有关的miR
参考文献
[1] Filios SR, Shalev A. β-Cell MicroRNAs: small but powerful[J]. Diabetes, 2015, 64 (11): 3631-3644. DOI: 10.2337/db15-0831.
[2] 王帅, 金磊, 海春旭, 李文丽. PI3K/Akt信号通路在胰岛素抵抗中作用的研究进展[J]. 毒理学杂志, 2015 (4): 313-316.
[3] Deiuliis JA. MicroRNAs as regulators of metabolic disease: Pathophysiologic significance and emerging role as biomarkers and therapeutics[J]. Int J Obes (Lond), 2016, 40 : 88-101. DOI: 10.1038/ijo.2015.170.
[4] Zhu H, Shyh-Chang N, Segrè AV, Shinoda G, Shah SP, Einhorn WS, Takeuchi A, Engreitz JM, Hagan JP, Kharas MG, Urbach A, Thornton JE, Triboulet R, Gregory RI. The Lin28/let-7 axis regulates glucose metabolism[J]. Cell, 2011, 147 (1): 81-94. DOI: 10.1016/j.cell.2011.08.033.
[5] Frost RJ, Olson EN. Control of glucose homeostasis and insulin sensitivity by the Let-7 family of microRNAs[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108 (52): 21075-21080. DOI: 10.1073/pnas.1118922109.
[6] Trajkovski M, Hausser J, Soutschek J, Bhat B, Akin A, Zavolan M, Heim MH, Stoffle M. MicroRNAs 103 and 107 regulate insulin sensitivity[J]. Nature, 2011, 474 (7353): 649-653. DOI: 10.1038/nature10112.
[7] Foley NH, O'Neill LA. miR-107: a toll-like receptor-regulated miRNA dysregulated in obesity and type Ⅱ diabetes[J]. J Leukoc Biol, 2012, 92 (3): 521-527. DOI: 10.1189/jlb.0312160.
[8] Yang YM, Seo SY, Kim TH, Kim SG. Decrease of microRNA-122 causes hepatic insulin resistance by inducing protein tyrosine phosphatase 1B, which is reversed by licorice flavonoid[J]. Hepatology, 2012, 56 (6): 2209-2220. DOI: 10.1002/hep.25912.
[9] Motohashi N, Alexander MS, Shimizu-Motohashi Y, Myers JA, Kawahara G, Kunkel LM. Regulation of IRS1/Akt insulin signaling by microRNA-128a during myogenesis[J]. J Cell Sci, 2013, 126 (12): 2678-2691. DOI: 10.1242/jcs.119966.
[10] Karolina DS, Armugam A, Tavintharan S, Wong MT, Lim SC, Sum CF, Jeyaseelan K. MicroRNA 144 impairs insulin signaling by inhibiting the expression of insulin receptor substrate 1 in type 2 diabetes mellitus[J]. PLoS One, 2011, 6 (8): e22839. DOI: 10.1371/journal.pone.0022839.
[11] Chakraborty C, Agoramoorthy G, Hsu MJ. Exploring the evolutionary relationship of insulin receptor substrate family using computational biology[J]. PloS One, 2011, 6 (2): e16580. DOI: 10.1371/journal.pone.0016580.
[12] Chakraborty C, Doss CG, Bandyopadhyay S, Sarkar BK, Haneef SA. Mapping the structural topology of irs family cascades through computational biology[J]. Cell Biochem Biophys, 2013, 67 (3): 1319-1331. DOI: 10.1007/s12013-013-9664-y.
[13] Jeong HJ, Park SY, Yang WM, Lee W. The induction of miR-96 by mitochondrial dysfunction causes impaired glycogen synthesis through translational repression of IRS-1 in SK-Hep1 cells[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2013, 434 (3): 503-508. DOI: 10.1016/j.bbrc.2013.03.104.
[14] Ryu HS, Park SY, Ma D, Zhang J, Lee W. The induction of microRNA targeting IRS-1 is involved in the development of insulin resistance under conditions of mitochondrial dysfunction in hepatocytes[J]. PloS One, 2011, 6 (3): 119-124.
[15] Li ZY, Na HM, Peng G, Pu J, Liu P. Alteration of microRNA expression correlates to fatty acid-mediated insulin resistance in mouse myoblasts[J]. Mol Biosyst, 2011, 7 (3): 871-877. DOI: 10.1039/C0MB00230E.
[16] Agarwal P, Srivastava R, Srivastava AK, Ali S, Datta M. miR-135a targets IRS2 and regulates insulin signaling and glucose uptake in the diabetic gastrocnemius skeletal muscle[J]. Biochim Biophys Acta, 2013, 1832 (8): 1294-1303. DOI: 10.1016/j.bbadis.2013.03.021.
[17] Dávalos A, Goedeke L, Smibert P, Ramírez CM, Warrier NP, Andreo U, Cirera-Salinas D, Rayner K, Suresh U, Pastor-Pareja JC, Esplugues E, Fisher EA, Penalva LO, Moore KJ, Suárez Y, Lai EC, Fernández-Hernando C. miR-33a/b contribute to the regulation of fatty acid metabolism and insulin signaling[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108 (22): 9232-9237. DOI: 10.1073/pnas.1102281108.
[18] Chakraborty C, Roy SS, Hsu MJ, Aqoramoorthy G. Landscape mapping of functional proteins in insulin signal transduction and insulin resistance: a network-based protein-protein interaction analysis[J]. PloS One, 2010, 6 (1): 79-89.
[19] Chakraborty C, Bandyopadhyay S, Maulik U, Aqoramoorthy G. Topology mapping of insulin-regulated glucose transporter GLUT4 using computational biology[J]. Cell Biochem Biophys, 2013, 67 (3): 1261-1274. DOI: 10.1007/s12013-013-9644-2.
[20] Backer JM. The regulation of Class IA PI 3-Kinases by inter-subunit interactions[J]. Curr Top Microbiol Immunol, 2010, 346 : 87-114.
[21] Zampetaki A, Mayr M. MicroRNAs in vascular and metabolic disease[J]. Circ Res, 2012, 110 (3): 508. DOI: 10.1161/CIRCRESAHA.111.247445.
[22] Liu J, Ye C, Liu W, Zhao W, Zhang YJ, Zhang H, Ying H. AICAR enhances insulin signaling via downregulation of miR-29[J]. Can J Physiol Pharmacol, 2015, 94 (1): 1-7.
[23] Ling HY, Ou HS, Feng SD, Zhang XY, Tuo QH, Chen LX, Zhu BY, Gao ZP, Tang CK, Yin WD, Zhang L, Liao DF. CHANGES IN microRNA (miR) profile and effects of miR-320 in insulin-resistant 3T3-L1 adipocytes[J]. Clin Exp Pharmacol Physiol, 2009, 36 (9): e32-e39. DOI: 10.1111/cep.2009.36.issue-9.
[24] Zhou T, Meng X, Che H, Shen N, Xiao D, Song X, Liang M, Fu X, Ju J, Li Y, Xu C, Zhang Y, Wang L. Regulation of insulin resistance by multiple MiRNAs via targeting the GLUT4 signalling pathway[J]. Cell Physiol Biochem, 2016, 38 (5): 2063-2078. DOI: 10.1159/000445565.
[25] Jordan SD, Krüger M, Willmes DM, Redemann N, Wunderlich FT, Brönneke HS, Merkwirth C, Kashkar H, Olkkonen VM, Böttger T, Braun T, Seibler J, Brüning JC. Obesity-induced overexpression of miRNA-143 inhibits insulin-stimulated AKT activation and impairs glucose metabolism[J]. Nat Cell Biol, 2011, 13 (4): 434-446. DOI: 10.1038/ncb2211.
[26] Takanabe R, Ono K, Abe Y, Takaya T, Horie T, Wada H, Kita T, Satoh N, Shimatsu A, Hasegawa K. Up-regulated expression of microRNA-143 in association with obesity in adipose tissue of mice fed high-fat diet[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2008, 376 (4): 728-732. DOI: 10.1016/j.bbrc.2008.09.050.
[27] Jordan SD, Krüger M, Willmes DM, Redemann N, Wunderlich FT, Brönneke HS, Merkwirth C, Kashkar H, Olkkonen VM, Böttger T, Braun T, Seibler J, Brüning JC. Obesity-induced overexpression of miRNA-143 inhibits insulin-stimulated AKT activation and impairs glucose metabolism[J]. Nat Cell Biol, 2011, 13 (4): 434-446. DOI: 10.1038/ncb2211.
[28] He A, Zhu L, Gupta N, Chang Y, Fang F. Overexpression of micro ribonucleic acid 29, highly upregulated in diabetic rats, leads to insulin resistance in 3T3-L1 adipocytes[J]. Mol Endocrinol, 2007, 21 (11): 2785-2794. DOI: 10.1210/me.2007-0167.
[29] Ling HY, Hu B, Hu XB, Zhong J, Feng SD, Qin L, Liu G, Wen GB, Liao DF. MiRNA-21 reverses high glucose and high insulin induced insulin resistance in 3T3-L1 adipocytes through targeting phosphatase and tensin homologue[J]. Exp Clin Endocrinol Diabetes, 2012, 120 (9): 553-559. DOI: 10.1055/s-00000017.
[30] Sayed D, He M, Hong C, Gao S, Rane S, Yang Z, Abdellatif M. MicroRNA-21 is a downstream effector of AKT that mediates its antiapoptotic effects via suppression of fas ligand[J]. J Biol Chem, 2010, 285 (26): 20281-20290. DOI: 10.1074/jbc.M110.109207.
[31] He Z, Cen D, Luo X, Li D, Li P, Liang L, Meng Z. Downregulation of miR-383 promotes glioma cell invasion by targeting insulin-like growth factor 1 receptor[J]. Med Oncol, 2013, 30 (2): 1-6.
[32] Horie T, Ono K, Nishi H, Iwanaga Y, Nagao K, Kinoshita M, Kuwabara Y, Takanabe R, Hasegawa K, Kita T, Kimura T. MicroRNA-133 regulates the expression of GLUT4 by targeting KLF15 and is involved in metabolic control in cardiac myocytes[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2009, 389 (2): 315-320. DOI: 10.1016/j.bbrc.2009.08.136.
[33] Esteves JV, Enguita FJ, Machado UF. MicroRNAs-mediated regulation of skeletal muscle GLUT4 expression and translocation in insulin resistance[J]. J Diabetes Res, 2017, 2017 : 7267910.
[34] 赵海燕, 王勇, 马永平, 陈宇红. 胰岛素信号转导障碍与胰岛素抵抗[J]. 新医学, 2010, 41 (4): 267-271.