应激耐受多系分化(Muse)细胞是从骨髓间充质细胞和皮肤纤维母细胞中分离出的一种新型的多能干细胞[1]。Muse细胞被认为是人体内唯一的多能干细胞,能够维持人体的稳态。Muse细胞具备与胚胎干细胞及诱导性多能干细胞相似的生物学特性,能够多向分化为3个胚层,并具有自我更新能力,同时Muse细胞又具有自身的特性——低端粒酶活性和非致瘤性[2]。Muse细胞的特性使其在组织的再生与修复方面有着巨大的应用潜能。笔者通过以下几点进行概述。
一、Muse细胞的分离培养及表面标志一般情况下,组织干细胞仅存在于干细胞所属的组织中,例如,神经干细胞仅存在大脑中,造血干细胞在骨髓中。但Muse细胞是一类独特的干细胞,其分布在整个人体而非局限于某个特定的器官或组织中。Muse细胞能直接从骨髓、脂肪、真皮及结缔组织中分离,也能够从培养的成纤维细胞及间充质干细胞中获得[1, 3-4]。Muse细胞最初被认为是压力耐受细胞,将间充质或成纤维细胞在胰酶或无血清培养基中培养过夜后发现大部分细胞死亡,而剩余的存活细胞中Muse细胞的比例很高[4]。目前Muse细胞的分离培养尚无统一的方法,一般采用最开始的胰蛋白酶长时间消化法进行分离培养,也可用磁珠分离或流式分选得到。
因在组织中比例较少,组织来源的Muse细胞并不是临床应用的最好来源,成纤维细胞和间充质细胞中Muse细胞比例相对较多。例如骨髓组织中,CD105/SSEA-3双阳的Muse细胞的比例为0.03%,而成纤维细胞和骨髓间充质细胞中Muse细胞的比例为1%~6%[1]。所以就临床应用而言,从培养的成纤维细胞或间充质细胞中分离得到Muse细胞更具前景。
Muse细胞表达间充质干细胞的表面标志CD105以及胚胎干细胞的表面标志[特异性胚胎抗原3(SSEA-3)]。Muse细胞在普通培养板中呈成纤维细胞样形态,单个Muse细胞悬浮培养后,能形成和胚胎干细胞的拟胚体类似的细胞团,并表达多能干细胞相关标志物,如Oct3/4、Sox2、Nanog和碱性磷酸酶等,但不表达其他干细胞的标志物,如造血干细胞(CD34)、皮肤前体细胞(Snail)、神经前体细胞(CD271)、血管周细胞(CD146)和内皮前体细胞(CD31)等[5]。
二、Muse细胞的胚层分化及自我更新能力Muse细胞是多能干细胞,能自发分化为3个胚层的细胞,也可以在细胞因子的诱导下分化成为3个胚层的细胞[6]。Muse细胞自发分化的效率并不高,但在特定的诱导条件下其分化效率可增高,Wakao等(2011年)的一项研究显示,在肝细胞、神经细胞特定培养条件下,Muse细胞能够有效分化。并不需要转导外源性的基因。尽管Muse细胞具有多能性,但其在自发分化时更趋向于分化为中胚层细胞[1]。2013年Yang等将单个Muse细胞悬浮培养的细胞集落转移到明胶中培养扩增,可见3个胚层的表面标志物均有表达。细胞重新进行黏附培养时可见新的细胞集落生成。重复3次后对细胞集落进行分析依然可见3个胚层的表面标志物,证明Muse细胞能够自我更新并保持分化为3个胚层的能力。
三、Muse细胞的非致瘤性和低端粒酶活性Muse细胞与胚胎干细胞及诱导性多能干细胞相似,均表达Nanog、Oct3/4和Sox2等多能基因。不同的是,Muse细胞端粒末端转移酶活性较低,在体内不会形成肿瘤[7]。将胚胎干细胞和诱导性多能干细胞接种到免疫缺陷小鼠中,8~12周后可形成畸胎瘤,然而将Muse细胞移植至免疫缺陷小鼠体内,6个月后却无形成畸胎瘤[1]。研究证明Muse细胞具有较低水平的端粒酶活性,与胚胎干细胞及诱导性多能干细胞的基因表达相比,Muse细胞的基因表达与细胞周期性进展有关,其端粒酶活性和基因表达水平与体细胞水平相当[8]。2011年Wakao等发现,与胚胎干细胞及诱导性多能干细胞相比,Muse细胞表达的“Yamanaka因子”低105倍,“Yamanaka因子”已被证明赋予细胞多能性和致瘤性,这或许可以解释Muse细胞如何保持其多能性,而不会形成畸胎瘤。
四、Muse细胞和非Muse细胞的不同角色Muse细胞和非Muse细胞之间存在明显的差异。首先,非Muse细胞不能在悬浮条件下形成Muse细胞样的细胞簇[1]。非Muse细胞贴壁培养才能存活。其次,Muse细胞表达多能性基因,而非Muse细胞并不表达,因此,非Muse细胞不具有多能性,不能分化为神经细胞(外胚层)、肝细胞(内胚层)甚至是同为中胚层的骨骼肌细胞等[9]。研究证明,人类成纤维细胞来源的Muse细胞能够跨过中胚层和外胚层的界限,分化为有功能的黑色素细胞。而非Muse细胞不能分化为有功能的黑色素细胞。证明Muse细胞在多能性方面显著高于非Muse细胞[10]。研究显示将皮肤成纤维细胞分为Muse细胞及非Muse细胞,非Muse细胞不能像Muse细胞一样被诱导为诱导性多能干细胞,因此间充质干细胞的多向分化和组织修复作用可能主要通过其中的Muse细胞实现[11]。与Muse细胞相反,非Muse细胞扮演的角色是复杂而多面的。尽管非Muse细胞无Muse细胞的3个胚层分化能力,但其具有营养、抗炎和免疫抑制作用,可以协同Muse细胞发挥组织修复作用[12]。
五、Muse细胞的组织修复功能胚胎干细胞及诱导性多能干细胞应用于临床之前需要满足以下条件:①必须体外分化为目的细胞;②在移植之前必须将未分化的多能干细胞清除。需满足上述准备条件是因为胚胎干细胞及诱导性多能干细胞在体内能形成畸胎瘤,高效的分化体系也不能保证分化率达到100%,仍会有少量的未分化细胞存在,仍存在致畸的风险。但对Muse细胞而言则无需上述条件,Muse细胞具有非致瘤性和低端粒酶活性,故其在临床使用前不需要大规模的处理程序,使用较方便。同时Muse细胞有能力迁移并整合到受损区域,然后自发分化为与组织兼容的靶细胞,因此,Muse细胞能在众多组织和器官中充当“修复细胞”[13]。例如,将绿色荧光蛋白标记的Muse细胞静脉注射到皮肤、肌肉和肝组织受损的免疫缺陷小鼠体内,其能在小鼠体内特异性分化,在移植后2~4周内表现为极强大的组织再生能力,形成真皮、腓肠肌肌肉和肝脏组织[1, 14-15]。研究显示,将Muse细胞分化的黑色素细胞移植到小鼠受损皮肤内,黑色素细胞色素化,检测到人黑色素细胞标志物阳性,这表明Muse细胞可能可作为一种理想的种子细胞而用于自体移植治疗色素障碍性疾病,如白癜风等[10, 16]。最近的研究显示Muse细胞可被诱导为角质形成细胞、成纤维细胞及黑色素细胞,并且Muse细胞来源的细胞可以分化为完整的皮肤组织,Muse细胞在皮肤再生方面有着广阔的应用前景[17]。有研究表明在急性心肌梗死患者中,急性期Muse细胞数量增加较多的患者相较Muse细胞数量增加较少的患者,其慢性期左心室功能的改善更明显[18]。携带有自杀基因的Muse细胞在治疗恶性胶质瘤中也表现出较强的安全性及迁移杀伤作用,表明Muse细胞在异基因细胞药物治疗方面也有应用潜力[19]。同时Muse细胞能够归巢于受损的肾小球,并在系统给药后自发分化成肾小球细胞[20]。在卒中和脑出血模型中Muse细胞能与宿主脑微环境整合后高比例分化为神经元细胞,并能重构神经元回路以减轻神经受损症状[21-22]。在免疫调节方面Muse细胞具有抗炎活性,能减少促炎性细胞因子如IFN-γ和TNF-α的分泌,Muse细胞可以潜在用作免疫调节剂来治疗免疫相关疾病[23]。
六、结语自干细胞被发现以来,其多向分化潜能被学者们期待能用来治疗各种疾病[24]。因伦理和致瘤性问题,胚胎干细胞及诱导性多能干细胞的临床应用受到限制。间充质干细胞虽然无致瘤的相关报道,但其在组织再生与功能修复方面仍存在很大争议。Muse细胞能从皮肤、脂肪、骨髓中获得,也可从间充质干细胞中分离得到,有不断自我更新的能力、低端粒酶活性和非致瘤性,而且其在体内能整合到损伤部位,具有较强的组织修复能力。Muse细胞在维持人体内在稳态过程中发挥着重要作用,下一步的研究重点在于明确Muse细胞维持人体内在稳态过程的机制。
总之,Muse细胞来源广泛、取材方便、在不同的理化环境和细胞因子的诱导下具有多向分化潜能,是组织工程、细胞移植及基因治疗领域的理想靶细胞,为临床上多种疾病的治疗提供了广阔的前景。
[1] |
Kuroda Y, Kitada M, Wakao S, Nishikawa K, Tanimura Y, Makinoshima H, Goda M, Akashi H, Inutsuka A, Niwa A, Shigemoto T, Nabeshima Y, Nakahata T, Nabeshima Y, Fujiyoshi Y, Dezawa M. Unique multipotent cells in adult human mesenchymal cell populations[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2010, 107(19): 8639-8643. DOI:10.1073/pnas.0911647107 |
[2] |
Fisch SC, Gimeno ML, Phan JD, Simerman AA, Dumesic DA, Perone MJ, Chazenbalk GD. Pluripotent nontumorigenic multilineage differentiating stress enduring cells (Muse cells): a seven-year retrospective[J]. Stem Cell Res Ther, 2017, 8(1): 227. DOI:10.1186/s13287-017-0674-3 |
[3] |
Liu Q, Zhang RZ, Li D, Cheng S, Yang YH, Tian T, Pan XR. Muse cells, a new type of pluripotent stem cell derived from human fibroblasts[J]. Cell Reprogram, 2016, 18(2): 67-77. DOI:10.1089/cell.2015.0085 |
[4] |
Wakao S, Akashi H, Kushida Y, Dezawa M. Muse cells, newly found non-tumorigenic pluripotent stem cells, reside in human mesenchymal tissues[J]. Pathol Int, 2014, 64(1): 1-9. |
[5] |
Tsuchiyama K, Wakao S, Kuroda Y, Ogura F, Nojima M, Sawaya N, Yamasaki K, Aiba S, Dezawa M. Functional melanocytes are readily reprogrammable from multilineage-differentiating stress-enduring (muse) cells, distinct stem cells in human fibroblasts[J]. J Invest Dermatol, 2013, 133(10): 2425-2435. DOI:10.1038/jid.2013.172 |
[6] |
Kuroda Y, Dezawa M. Mesenchymal stem cells and their subpopulation, pluripotent muse cells, in basic research and regenerative medicine[J]. Anat Rec (Hoboken), 2014, 297(1): 98-110. DOI:10.1002/ar.v297.1 |
[7] |
Ogura F, Wakao S, Kuroda Y, Tsuchiyama K, Bagheri M, Heneidi S, Chazenbalk G, Aiba S, Dezawa M. Human adipose tissue possesses a unique population of pluripotent stem cells with non-tumorigenic and low telomerase activities: potential implications in regenerative medicine[J]. Stem Cells Dev, 2014, 23(7): 717-728. DOI:10.1089/scd.2013.0473 |
[8] |
Simerman AA, Perone MJ, Gimeno ML, Dumesic DA, Chazenbalk GD. A mystery unraveled: nontumorigenic pluripotent stem cells in human adult tissues[J]. Expert Opin Biol Ther, 2014, 14(7): 917-929. DOI:10.1517/14712598.2014.900538 |
[9] |
Kuroda Y, Wakao S, Kitada M, Murakami T, Nojima M, Dezawa M. Isolation, culture and evaluation of multilineage-differentiating stress-enduring (Muse) cells[J]. Nat Protoc, 2013, 8(7): 1391-1415. DOI:10.1038/nprot.2013.076 |
[10] |
Yamauchi T, Yamasaki K, Tsuchiyama K, Koike S, Aiba S. The potential of muse cells for regenerative medicine of skin: procedures to reconstitute skin with muse cell-derived keratinocytes, fibroblasts, and melanocytes[J]. J Invest Dermatol, 2017, 137(12): 2639-2642. DOI:10.1016/j.jid.2017.06.021 |
[11] |
Wakao S, Kitada M, Dezawa M. The elite and stochastic model for iPS cell generation: multilineage-differentiating stress enduring (Muse) cells are readily reprogrammable into iPS cells[J]. Cytometry A, 2013, 83(1): 18-26. |
[12] |
Heneidi S, Simerman AA, Keller E, Singh P, Li X, Dumesic DA, Chazenbalk G. Awakened by cellular stress: isolation and characterization of a novel population of pluripotent stem cells derived from human adipose tissue[J]. PLoS One, 2013, 8(6): e64752. DOI:10.1371/journal.pone.0064752 |
[13] |
Simerman AA, Phan JD, Dumesic DA, Chazenbalk GD. Muse cells: nontumorigenic pluripotent stem cells present in adult tissues-a paradigm shift in tissue regeneration and evolution[J]. Stem Cells Int, 2016, 2016: 1463258. |
[14] |
Iseki M, Kushida Y, Wakao S, Akimoto T, Mizuma M, Motoi F, Asada R, Shimizu S, Unno M, Chazenbalk G, Dezawa M. Muse cells, nontumorigenic pluripotent-like stem cells, have liver regeneration capacity through specific homing and cell replacement in a mouse model of liver fibrosis[J]. Cell Transplant, 2017, 26(5): 821-840. DOI:10.3727/096368916X693662 |
[15] |
Katagiri H, Kushida Y, Nojima M, Kuroda Y, Wakao S, Ishida K, Endo F, Kume K, Takahara T, Nitta H, Tsuda H, Dezawa M, Nishizuka SS. A distinct subpopulation of bone marrow mesenchymal stem cells, muse cells, directly commit to the replacement of liver components[J]. Am J Transplant, 2016, 16(2): 468-483. DOI:10.1111/ajt.13537 |
[16] |
Yamauchi T, Yamasaki K, Tsuchiyama K, Koike S, Aiba S. A quantitative analysis of multilineage-differentiating stress-enduring (Muse) cells in human adipose tissue and efficacy of melanocytes induction[J]. J Dermatol Sci, 2017, 86(3): 198-205. DOI:10.1016/j.jdermsci.2017.03.001 |
[17] |
Hu MS, Longaker MT. A Muse for skin regeneration[J]. J Invest Dermatol, 2017, 137(12): 2471-2472. DOI:10.1016/j.jid.2017.07.825 |
[18] |
Tanaka T, Nishigaki K, Minatoguchi S, Nawa T, Yamada Y, Kanamori H, Mikami A, Ushikoshi H, Kawasaki M, Dezawa M, Minatoguchi S. Mobilized muse cells after acute myocardial infarction predict cardiac function and remodeling in the chronic phase[J]. Circ J, 2017, 82(2): 561-571. |
[19] |
Yamasaki T, Wakao S, Kawaji H, Koizumi S, Sameshima T, Dezawa M, Namba H. Genetically engineered multilineage-differentiating stress-enduring cells as cellular vehicles against malignant gliomas[J]. Mol Ther Oncolytics, 2017, 6: 45-56. DOI:10.1016/j.omto.2017.06.001 |
[20] |
Uchida N, Kushida Y, Kitada M, Wakao S, Kumagai N, Kuroda Y, Kondo Y, Hirohara Y, Kure S, Chazenbalk G, Dezawa M. Beneficial effects of systemically administered human muse cells in adriamycin nephropathy[J]. J Am Soc Nephrol, 2017, 28(10): 2946-2960. DOI:10.1681/ASN.2016070775 |
[21] |
Uchida H, Niizuma K, Kushida Y, Wakao S, Tominaga T, Borlongan CV, Dezawa M. Human Muse cells reconstruct neuronal circuitry in subacute lacunar stroke model[J]. Stroke, 2017, 48(2): 428-435. DOI:10.1161/STROKEAHA.116.014950 |
[22] |
Shimamura N, Kakuta K, Wang L, Naraoka M, Uchida H, Wakao S, Dezawa M, Ohkuma H. Neuro-regeneration therapy using human Muse cells is highly effective in a mouse intracerebral hemorrhage model[J]. Exp Brain Res, 2017, 235(2): 565-572. DOI:10.1007/s00221-016-4818-y |
[23] |
Gimeno ML, Fuertes F, Barcala Tabarrozzi AE, Attorressi AI, Cucchiani R, Corrales L, Oliveira TC, Sogayar MC, Labriola L, Dewey RA, Perone MJ. Pluripotent nontumorigenic adipose tissue-derived muse cells have immunomodulatory capacity mediated by transforming growth factor-β1[J]. Stem Cells Transl Med, 2017, 6(1): 161-173. DOI:10.5966/sctm.2016-0014 |
[24] |
蔡亮鸣, 王昭妮, 陈壮桂. 间充质干细胞对重症支气管哮喘治疗作用的研究进展[J]. 新医学, 2017, 48(5): 285-292. |